Глава 2 Взятие, условия хранения и доставка материала для проведения лабораторных исследований

We use cookies. Read the Privacy and Cookie Policy

Глава 2 Взятие, условия хранения и доставка материала для проведения лабораторных исследований

Доставка клинического и биохимического материала в клинико-диагностическую лабораторию

Выполняя лабораторные исследования, работники лаборатории стремятся к наиболее точному воспроизведению аналитических процедур для получения достоверного результата анализа, однако из практики работы любой лаборатории известно: результаты лабораторных анализов не всегда правильны. Среди многочисленных факторов, определяющих достоверность лабораторных результатов, необходимо учитывать факторы преаналитического этапа.

Факторы преаналитического этапа

Канцелярские ошибки

Первый из возможных источников погрешностей связан с присущей человеку способностью ошибаться. Канцелярские ошибки классифицируют на 3 типа: ошибочно назван больной, ошибочно идентифицирован образец и ошибочно заполнен бланк назначений. Канцелярские ошибки могут иметь серьезные последствия. Как только ошибка обнаружена, причина ее должна быть немедленно выявлена. Необходимы определенные мероприятия для предупреждения таких ошибок:

1) если имеются два больных с одинаковыми фамилиями, лаборант перед собиранием образца может спросить возраст у больного;

2) если возраст одинаковый, то к фамилии добавляется номер палаты;

3) каждый бланк с результатами должен проверять заведующий лабораторией (или его заместитель), так как очень трудно самому найти свою собственную ошибку.

Биологические факторы

Эта группа факторов имеет объективный, биологический характер и должна приниматься во внимание прежде всего врачом, назначающим лабораторное исследование пациенту.

Биологические факторы можно разделить на учитываемые и устранимые. Чтобы избежать нежелательных отклонений результатов от истинного содержания аналитов в организме пациента из-за влияния устранимых биологических факторов (прием пищи, голодание, положение тела, физическая активность, курение, употребление алкоголя), перед исследованием пациенту и персоналу, собирающему биоматериал, должны быть даны четкие инструкции.

Учитываемые биологические факторы (пол, возраст, этнос, физическая тренированность, беременность, биоритмы, влияние среды обитания) необходимо помнить при интерпретации полученных результатов.

Ятрогенные факторы

1) диагностические процедуры (пальпация, пункция, биопсия, функциональные тесты, физический стресс при нагрузках, эргометрии, эндоскопия, введение контрастных средств);

2) оперативные вмешательства;

3) различные лечебные процедуры (вливания и переливания, диализ, ионизирующее облучение);

4) лекарственные средства.

Клиницисты порой забывают, что диагностические и лечебные мероприятия, проводимые ими, небезразличны для деятельности ряда физиологических систем пациента, что отражается и на многих лабораторных показателях. Так, например, массаж предстательной железы, введение катетера исказят активность кислой фосфатазы; физиотерапевтические процедуры, рентгеновские исследования изменят гематологические и биохимические показатели.

Разнообразие современного рынка лекарств и их применение в достаточно большом ассортименте создают все возрастающие трудности для обеспечения правильности лабораторных результатов на фоне применения этих медикаментов.

Очень важно собирать материал для исследования до начала приема лечебных препаратов.

При исследовании 17-КС необходимо исключить не менее чем за 2 недели прием тестостерона и ряда лекарственных веществ, мешающих исследованию (либриум, элениум, метиприлон, хлорпромазин, дигитоксин).

Перед определением сахара необходимо приостановить лечение тетрациклином, хлортетрациклином, так как они, выделяясь с мочой, искажают результаты.

После приема больших доз аспирина меняются показатели билирубина, АлАТ, щелочной фосфатазы, калия и другие.

Условия взятия, временного хранения и транспортировка биоматериала

Большое значение для результатов имеет техника взятия образца, используемые при этом инструменты, посуда, в которой хранится образец, условия его хранения и транспортировки.

Условия взятия биоматериала клиническим персоналом должны быть предметом постоянного внимания не только лечащих врачей, заинтересованных в получении достоверной лабораторной информации, но и руководителей медицинских учреждений. Как главный врач, так и главная медицинская сестра должны понимать, что нарушение правил взятия биоматериала чревато нежелательными последствиями экономического (повторные трудозатраты по всей производственной цепочке: медсестра – санитарка – лаборант; излишняя трата расходных материалов и т. д.) и медицинского характера (повторное взятие биоматериала у пациента; задержка принятия необходимых для ведения пациента диагностических и лечебных решений; возможность медицинских ошибок, наносящих ущерб пациенту).

Пожалуй, наиболее простой и в то же время эффективной мерой служит соблюдение единого правила взятия крови натощак, утром, без физического напряжения в предшествующий период; в положении пациента лежа или сидя; острой иглой достаточно большого диаметра, чтобы не возникало никаких повреждений эритроцитов, способных вызвать гемолиз; при наложении жгута на минимально необходимое время. Существенную помощь при этом может оказать применение различных устройств типа «вакутейнеров», т. е. вакуумных пробирок, накрытых резиновой мембраной и содержащих необходимые консерванты. Стандартизованная цветная маркировка снижает возможность перепутывания пробирок, предназначенных для определенных видов исследования. Тем самым решается сразу несколько задач: сокращается время взятия крови за счет ее ускоренного всасывания в вакуумную пробирку; кровь немедленно вступает в контакт с необходимым для сохранения аналита консервантом; пробирки поступают в лабораторию уже маркированными в соответствии с их предназначением для аналитической процедуры.

Упомянутые выше источники погрешностей не поддаются контролю качества (как на аналитическом этапе). Их в большинстве случаев не очень легко распознавать. Поэтому следует добиться стандартизированных условий, обязательных при взятии биопроб.

Кроме того, необходимо помнить о важности регулярного инструктирования персонала клиник и амбулаторий о правилах и условиях собирания и хранения биологического материала для различных клинико-диагностических исследований. Для этого в каждой лаборатории должна быть разработана инструкция по взятию, доставке и хранению биоматериала. Сотрудники лаборатории проводят первоначальную подготовку всего персонала по пользованию указанной инструкцией.

В случае несоблюдения условий образцы не подлежат обработке, и об этом сообщается лечащему врачу для повторного проведения исследования.

Правила подготовки обследуемых, взятия и условия хранения и доставки материала для проведения исследований в КДЛ

Исследование мочи

Общие принципы сбора мочи

Для общего анализа мочу собирают утром натощак сразу после сна в сухую, чистую посуду. Перед сбором мочи проводят тщательный туалет наружных половых органов. Лежачих больных подмывают слабым раствором марганцовокислого калия, затем вытирают сухим стерильным ватным тампоном от половых органов к заднему проходу. По возможности надо собирать мочу сразу в посуду, в которой она доставляется в лабораторию.

Собранную мочу как можно быстрее доставляют в лабораторию!

Собирание суточной мочи

Пациенты собирают мочу в течение 24 ч на обычном питьевом режиме (1,5–2 л в сутки). Утром в 6–8 ч больной освобождает мочевой пузырь (эту порцию мочи выливают), а затем в течение суток всю мочу собирают в чистый сосуд с крышкой. Последняя порция берется точно в то же время, когда накануне был начат сбор. Если не вся моча направляется в лабораторию, то количество мочи измеряют мерным цилиндром, отливают часть в чистый сосуд и обязательно указывают объем суточной мочи.

Мочу во время сбора хранят в холодильнике. В первую порцию собираемой за сутки мочи добавляют консерванты:

1) тимол: несколько кристаллов тимола на 100 мл мочи;

2) формалин: приблизительно 3–4 капли на 100 мл мочи;

3) хлороформ: 2–3 мл хлороформной воды (5 мл хлороформа на 1 л воды) на 100 мл мочи;

4) борная кислота: 3–4 гранулы на 100 мл мочи;

5) ледяная уксусная кислота: 5 мл на все количество суточной мочи.

Нельзя использовать мочу во время менструации.

Исследования мочи по методу Нечипоренко

Для исследования мочи по методу Нечипоренко собирают среднюю порцию утренней мочи и немедленно доставляют в лабораторию во избежание разрушения клеточных элементов.

Проба по Зимницкому

Собирают за сутки 8 порций мочи: в 6 ч утра больной опорожняет мочевой пузырь (эта порция выливается). Затем, начиная с 9 ч утра, точно каждые 3 ч собирают 8 порций мочи в отдельные банки (до 6 ч утра следующего дня). На каждой банке отмечается время сбора мочи. Все порции мочи доставляют в КДЛ. Желательно, чтобы количество жидкости, выпитой пациентом в эти сутки, превышало 1–1,5 л.

Исследование кала

Кал для исследования должен быть собран в чистую, сухую, широкогорлую посуду, желательно стеклянную. Следует избегать примеси к калу мочи, выделений из половых органов, лекарств.

Кал доставляется в лабораторию утром; желательно, чтобы с момента дефекации до исследования прошло не более 12 ч (при условии хранения на холоде). Нельзя направлять кал на исследование после клизм, а также рентгенологического исследования желудка и кишечника.

При исследовании кала, основной целью которого является определение функциональной способности пищеварительного тракта, т. е. степени усвоения пищевых веществ, необходимо в течение 4–5 дней соблюдать специальную диету, содержащую установленное количество различных пищевых продуктов. Можно использовать 2 диеты – Шмидта и Певзнера; диета Шмидта является щадящей, диета Певзнера представляет максимальную пищевую нагрузку для здорового человека.

Диета Шмидта: дневной рацион (распределяется на 5 приемов пищи) – 1–1,5 л молока, 2–3 яйца всмятку, белый хлеб с маслом, 125 г мяса, 200 г картофельного пюре, овсяная каша. Общая калорийность – 2250 калорий.

Диета Певзнера: дневной рацион: 200 г белого и 200 г черного хлеба, 250 г жареного мяса, 100 г масла, 40 г сахара, жареный картофель, морковь, салаты, квашеная капуста, гречневая и рисовая каши, компот, свежие фрукты. Общая калорийность – 3250 калорий.

При выборе диеты необходимо учитывать состояние органов пищеварения, а также привычный характер питания. Пробную диету дают в течение 4–5 дней, копрологическое исследование проводят троекратно: на 3, 4, 5-й день (при условии ежедневного самостоятельного опорожнения кишечника).

При невозможности использовать указанные диеты достаточно обычной смешанной пищи, содержащей необходимые пищевые вещества в умеренном, но достаточном количестве.

При исследовании кала с целью обнаружения скрытого кровотечения за 3 дня до анализа следует исключить из диеты мясо, рыбу, зеленые овощи, помидоры, а также лекарства, содержащие металлы (железо, медь).

Сбор материала для исследования на простейшие

Кал на лямблии исследуют трехкратно с интервалом в 5 дней.

Если кал оформленный, то перед сбором на исследование нужно принимать солевое слабительное в течение 3–5 дней: 5 %-ный сернокислый магний (приготовленный из 20 %-ного раствора в разведении 1: 4) по 1 ч. л. 3 раза в день после еды детям до 5 лет, 1 дес. л. 3 раза в день – до 8 лет, по 1 ст. л. 3 раза в день – старше 8 лет.

Кал собирают в чистую, обязательно сухую посуду, так как дезинфицирующие средства, примесь простой воды или мочи губительно действуют на простейших.

Нельзя проводить исследование после масляных клизм, приема бария или висмута.

Доставлять кал необходимо в теплом виде в течение 30 мин после дефекации либо в замороженном виде в течение суток.

Сбор материала для исследования на яйца гельминтов

Кал для исследования на яйца гельминтов забирают из разных мест разовой порции (общее количество – 10–15 г) в сухую стеклянную посуду менее суточной давности. Соскоб с перианальных складок делают с помощью деревянного шпателя, смоченного в 50 %-ном растворе глицерина или 1 %-ном растворе соды.

Осторожно производят легкое соскабливание по всей окружности анального отверстия с поверхности перианальных складок, соскоб проводят утром до дефекации, у женщин – и до мочеиспускания. Полученный материал снимают со шпателя краем покровного стекла и помещают в каплю 50 %-ного глицерина на предметном стекле.

Если соскоб производят в лаборатории и полученный материал должен быть доставлен в КДЛ через некоторый интервал времени, для удобства транспортировки можно использовать пузырьки от пенициллина: шпатель после соскабливания опускают в пенициллиновый пузырек с 2–3 каплями 50 %-ного глицерина и ставят пузырек в ячейку коробки.

Исследование спинномозговой жидкости

Спинномозговую жидкость получают путем люмбальной пункции, которую проводит врач-клиницист. Люмбальную пункцию производят между остистыми отростками III и IV или IV и V поясничных позвонков. Для проведения пункции укладывают больного на бок, при этом ноги должны быть согнуты в коленях, притянуты к животу, чтобы обеспечить согнутое положение позвоночника. Чтобы найти место пункции, проводят линию (тампоном, смоченным йодом), соединяющую высшие точки гребней подвздошных костей (линия Якоби). Эта линия обычно пересекает остистый отросток четвертого поясничного позвонка. Кожу тщательно дезинфицируют, вводят иглу с мандреном. Когда игла достигает подпаутинного пространства (расстояние от поверхности кожи до канала 6–7 см), мандрен вынимают и собирают вытекающую жидкость. Количество жидкости, извлекаемой без вреда для больного, – 8-10 мл. Место пункции закрывают стерильным материалом, больного оставляют в положении лежа на спине без подушки в течение суток. В лабораторию ликвор должен быть доставлен немедленно после пункции в стерильных пробирках, закрытых стерильными ватными пробками. Для предотвращения образования сгустка фибрина в пробирки добавляют по 1 капле ЭДТА.

Повторную пункцию больному рекомендуется проводить не ранее чем через неделю.

Исследование дуоденального содержимого

Взятие дуоденального содержимого проводит медицинская сестра путем дуоденального зондирования.

Время взятия – 8–9 ч утра.

Подготовка пациента: отменяются все лекарства, содержащие панкреатические ферменты, как минимум за сутки до исследования (лучше – за 3 дня). Зондирование проводят натощак после 14-часового голодания; разрешается выпить немного воды (несколько глотков), но не позднее чем за 2 ч до исследования.

Зонд вводят в положении больного сидя. При этом больной должен спокойно дышать и делать активные глотательные движения. Обычно через 5-10 мин первая метка оказывается у зубов, т. е. олива достигает желудка; больного укладывают на правый бок и подкладывают под правый бок валик; больной продолжает медленно заглатывать зонд до второй метки. Дальнейшее продвижение зонда через привратник осуществляется благодаря перистальтике желудка, этот период обычно продолжается 1,5 ч. Свободный конец зонда опускается в одну из пробирок, находящихся в штативе на скамеечке ниже изголовья больного. Пока олива находится в желудке, из зонда вытекает желудочное содержимое – мутная жидкость кислой реакции. При прохождении оливы в двенадцатиперстную кишку в пробирку начинает поступать прозрачная желтая желчь щелочной реакции. Желчь собирают отдельными небольшими порциями в ряд пробирок (в каждую пробирку собирают желчь примерно в течение 5 мин). Проконтролировать правильное положение зонда можно пробой с воздухом: шприцем вводят в зонд немного воздуха: при нахождении зонда в желудке больной ощущает поступление воздуха и урчание, если зонд находится в двенадцатиперстной кишке, никаких ощущений нет. Желчь выделяется по каплям, неравномерно, первые порции обычно золотисто-желтого цвета, прозрачны, слегка вязкой консистенции. Эта желчь происходит из желчного протока и обозначается как порция «А». Через 10–20 мин после начала выделения желчи вводят раздражитель, вызывающий сокращение желчного пузыря. Некоторые раздражители вводят через зонд, например 30–50 %-ный раствор сернокислого магния, или оливковое масло, или яичные желтки, раствор 10 %-ного сорбита. Другие раздражители вводятся парентерально: наилучшим раздражителем для желчного пузыря является холецистокинин, который вводят внутривенно в дозе 75 ЕД (1 ампула).

Через 15–20 мин отмечают выделение «пузырной» желчи темно-оливкового цвета (порция «В») обычно в количестве 30–60 мл. Если после введения раздражителя сокращения желчного пузыря не наступило, то повторно вводят тот же раздражитель. Продолжительность выделения порции «В» – 10–15 мин. После опорожнения желчного пузыря выделяется более светлая и прозрачная печеночная желчь – порция «С». После получения 2–3 пробирок этой порции зонд извлекают, предварительно пропустив через него 20–30 мл воды или раствора глюкозы, чтобы удалить желчь.

Все полученные порции желчи как можно быстрее доставляют в КДЛ. Анализ желчи следует проводить сразу после получения, так как клетки могут разрушаться под действием ферментов.

При проведении дуоденального зондирования детям зонд вводят на меньшее расстояние, чем взрослым. Это расстояние зависит от возраста: новорожденным – до 25 см, детям до 6 месяцев – до 30 см, 1 года – до 35 см, 2–6 лет – 40–50 см, 6-14 лет – 45–55 см.

Исследование мокроты

Обычно собирают утреннюю порцию мокроты до приема пищи (в 8–9 ч утра), полученную путем откашливания. Следует избегать попадания в образец слюны и секрета носоглотки или синусов. Мокроту собирают в чистую сухую широкогорлую склянку.

Предварительно больной должен прополоскать рот и глотку кипяченой водой и вычистить зубы. Если мокрота спонтанно не отделяется, можно применить ингаляцию смеси растворов хлорида натрия (15 %) и пропиленгликоля (20 %), предварительно подогретой до 37 °C. После ингаляции в течение 20 мин больной обычно откашливает мокроту.

Желательно доставить в лабораторию и исследовать свежевыделенную мокроту как можно скорее, хотя для некоторых исследований (например, исследование на микобактерии туберкулеза) отсрочка не приносит большого вреда.

Данный текст является ознакомительным фрагментом.